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  • Einleitung
  • 1. Arterie isolieren und transektieren
  • 2. Naht vordere Arterienwand
  • 3. Nähen Sie die vordere Rückwand
  • 4. Anastomose testen
  • Diskussion

Mikrochirurgische Technik für 1mm Gefäß End-to-End-Anastomose

53959 views

Yelena Akelina, DVM
Columbia University Microsurgery Research and Training Laboratory

Main Text

Dieser Artikel beschreibt die Technik zur Durchführung einer End-to-End-arteriellen Anastomose an einer Rattenfemoralarterie mit einem Durchmesser von 1 mm. Die mikrochirurgische Anastomose ist eine Technik, die für freie Lappentransfers, Transplantationschirurgie und andere chirurgische Anwendungen erforderlich ist. Dieser Videoartikel zeigt die mikrochirurgische Anastomose-Technik im Detail und deckt Aspekte ab, die ohne direkte Visualisierung schwer zu erfassen sind. Die Laborumgebung ist ideal, um die heiklen und akribischen Manöver der Mikrochirurgie zu üben und sich mit dem Mikroskop und den Spezialwerkzeugen vertraut zu machen. Wir hoffen, dass dieser Artikel den angehenden Auszubildenden vor der Teilnahme an Kursen in unserem Labor vertraut macht.

  1. Carl Zeiss OPMI MC chirurgisches Stereomikroskop
  2. Optronik Videosystem
  3. Standard-Mikrochirurgie-Instrumente
  4. 10-0 Nylonnähte

Die Entwicklung der mikrochirurgischen Anastomose hat komplexe rekonstruktive chirurgische Verfahren ermöglicht, einschließlich freier Gewebetransfertransplantate zur Abdeckung großer Gewebedefekte, Replantation von Gliedmaßen, Fingern, Zehen und der Revaskularisation schlecht durchbluteter Organe. Der Verschluss oder die Abdeckung großer Defekte nach Trauma oder Tumorresektion erfordert oft freie Gewebetransfertransplantate und zahlreiche Anastomosen. Mikrochirurgische Techniken können auch als neuer Ansatz verwendet werden, um eine Lymphdrainage bei Lymphödemen zu erreichen.

Dr. Jules Jacobson von der University of Vermont beschrieb erstmals 1960 die Verwendung eines Mikroskops zur Anastomose von Gefäßen von nur 1,4 mm. 1963 führten die Handchirurgen der University of Louisville, Dr. Harold Kleinert und Dr. Mort Kasdan, die erste Revaskularisation einer partiellen digitalen Amputation durch. Im Jahr 1964 pflanzte Dr. Harry J. Buncke in einem Labor in seiner Garage erfolgreich ein Kaninchenohr wieder und anastomosierte Blutgefäße von 1 mm Durchmesser. Moderne mikrochirurgische Techniken sind heute grundlegende Werkzeuge der plastischen Chirurgie, die eine Weichteilabdeckung und Wiederherstellung der Funktion nach Traumata oder onkologischen Resektionen ermöglichen.

Nachdem die Anastomose gemacht wurde, muss sie heilen und reifen, wenn sie überleben soll. Die Bildung eines Thrombozytenpfropfens ist der erste Schritt in einer Reihe von Ereignissen zur Heilung und Reifung einer frischen Anastomose. Bei einer Verletzung der Intima löst freiliegendes Kollagen die Adhäsion und Aggregation von Blutplättchen aus. Dies wiederum aktiviert Fibrinogen, das an Blutplättchen haftet und Blutplättchen miteinander verbindet, um einen Thrombozytenpfropfen zu bilden. Fibrinogen wird dann in Fibrin umgewandelt, das den Thrombozytenpfropfen stärkt. Wenn die Gefäßwände nicht beschädigt sind und die Anastomose sicher ist, verschwindet der Thrombozytenpfropfen in den ersten 3 bis 5 Tagen und am Tag 5 ist die Pseudointima vorhanden. Ein bis zwei Wochen später ist die anastomotische Stelle mit neuem Endothel bedeckt.

Wenn jedoch das Endothel zu stark geschädigt wird, setzt sich die Thrombozytenaggregation fort und löst nach Erreichen einer bestimmten kritischen Masse eine Kaskade von Ereignissen aus, die zur Thrombusbildung im Gefäß führen. Die kritische Phase der Thrombusbildung in der Anastomose sind die ersten 3-5 Tage der Heilung. Wenn sich ein Thrombus bildet und nicht beseitigt wird, schlägt die Anastomose fehl.

  1. Die Gefäße werden vorbereitet, indem alle durch ein Trauma beschädigten Bereiche entfernt werden
  2. Entfernen Sie alle intravaskulären Gerinnsel und Ablagerungen und spülen Sie mit heparinisierter Kochsalzlösung
  3. Für die End-to-End-Anastomose, wie in diesem Artikel gezeigt, sollten die Enden der beiden Gefäße ungefähr gleich groß sein
  4. Gefäßseitenäste werden untersucht und ligiert, um die Hämatombildung zu verhindern
  5. Vermeiden Sie Gefäßspannungen, Knicken und Verdrehen. Bei übermäßiger Spannung ist es vorzuziehen, eine Venentransplantation durchzuführen
  6. Standardnähte sind einfach, unterbrochen und in voller Dicke. Dies ist der Standard, mit dem alle neuen anastomotischen Techniken verglichen werden.
  7. Nachdem der Fluss hergestellt ist, baden Sie die anastomotischen Stellen in warmer Bewässerung und Lidocain oder Papaverin, um Vasospasmus zu lindern
  8. Untersuchen Sie Anastomosen am Ende des Eingriffs und führen Sie den Gefäßstreifentest durch, um den Fluss zu überprüfen. So führen Sie den Streifentest durch:
    1. Verschließen Sie das Gefäß distal zur Anastomose vorsichtig mit einer Mikrozange und "streifen" Sie das Gefäß mit einer weiteren Mikrozange in Strömungsrichtung distal von der Anastomose
    2. Es sollte dann beobachtet werden, dass ein reger Blutfluss mit einer guten distalen Pulsation über die Anastomose zurückkehrt, wenn die proximale Mikrozange freigesetzt wird.

Der Autor hat keine finanzielle Beziehung zu den in diesem Artikel erwähnten Ausrüstungsunternehmen.

Dieses Verfahren wurde gemäß Protokollen durchgeführt, die von der IUCUC an der Columbia University überprüft und genehmigt wurden.

Citations

  1. Leung CC, Ghanem AM, Tos P, Ionac M, Froschauer S, Myers SR. Auf dem Weg zu einem globalen Verständnis und einer Standardisierung der Aus- und Weiterbildung in der Mikrochirurgie. Arch Plast Surg. 2013;40(4):304-311. doi:10.5999/aps.2013.40.4.304.
  2. Myers SR, Froschauer S, Akelina Y, Tos P, Kim JT, Ghanem AM. Mikrochirurgische Ausbildung für das einundzwanzigste Jahrhundert. Arch Plast Surg. 2013;40(4):302-303. doi:10.5999/aps.2013.40.4.302.
  3. Martins PN, Montero EF. Mikrochirurgische Grundausbildung. Bemerkungen und Vorschlag. Acta Cir BHs. 2007;22(1):79-81. doi:10.1590/S0102-86502007000100014.
  4. Raine T. Mikrovaskuläre Techniken. In: Jurkiewicz MJ, Krizek TJ, Mathes SJ, Ariyan S, Hrsg. Plastische Chirurgie: Prinzipien und Praxis . St. Louis, MO: Mosby; 1990:1573-1591.
  5. Sanders WE. Prinzipien der mikrovaskulären Chirurgie. In: Green DP, Hrsg. Operative Handchirurgie . 3. Auflage. New York, NY: Churchill Livingstone; 1993:1039-1083.
  6. Serafin D. Atlas der mikrochirurgischen Kompositgewebetransplantation. Philadelphia, PA: Saunders; 1996.
  7. Shenaq SM, Sharma SK. Prinzipien der mikrovaskulären Chirurgie. In: Aston SJ, Beasley RW, Thorne CHM, Hrsg. Grabb and Smith's Plastic Surgery . 5. Auflage. Philadelphia, PA: Lippincott Williams & Wilkins; 1997:73-77.
  8. Hayhurst JW, O'Brien BM. Eine experimentelle Studie über mikrovaskuläre Technik, Durchgängigkeitsraten und verwandte Faktoren. Br J Plast Surg. 1975;28(2):128-132. doi:10.1016/S0007-1226(75)90175-7.
  9. Moran SL, Illig KA, Green RM, Serletti JM. Freigewebetransfer bei Patienten mit peripherer Gefäßerkrankung: eine 10-jährige Erfahrung. Plast Reconstr Surg. 2002;109(3):999-1006. doi:10.1097/00006534-200203000-00031.
  10. Shenaq SM, Klebuc MJ, Vargo D. Freigewebetransfer mit Hilfe der Lupenvergrößerung: Erfahrungen mit 251 Verfahren. Plast Reconstr Surg. 1995;95(2):261-269. doi:10.1097%2f00006534-199502000-00005.
  11. Morrison WA, McCombe D. Digitale Replantation. Hand Clin. 2007;23(1):1-12. doi:10.1016/j.hcl.2006.12.001.
  12. Buncke HJ Jr., Schulz WP. Totale Ohr-Reimplantation beim Kaninchen unter Verwendung von Mikrominiatur-Gefäßanastomosen. Br J Plast Surg. 1966;19(1):15-22. doi:10.1016/S0007-1226(66)80003-6.

Cite this article

Akelina Y. Mikrochirurgische Technik für 1mm Gefäß End-to-End-Anastomose. J Med Einblick. 2014;2014(2). doi:10.24296/jomi/2.

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Authors

Filmed At:

Columbia University Microsurgery Research and Training Laboratory

Article Information

Publication Date
Article ID2
Production ID0032
Volume2014
Issue2
DOI
https://doi.org/10.24296/jomi/2